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抑制ELISA試劑盒實(shí)驗(yàn)*新方法

日期:2025-05-08 07:35
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摘要: 抑制ELISA試劑盒實(shí)驗(yàn)*新方法 一、封閉液、洗滌液及保護(hù)液的優(yōu)化 1、封閉液的優(yōu)化 采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法進(jìn)行封閉,其封閉液的組成為:10mM磷酸鹽緩沖液含1%的牛血清白蛋白(BSA)。 2、 洗滌液的配制 采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法配制洗滌液。 3、 酶標(biāo)板保護(hù)液的優(yōu)化 酶標(biāo)板經(jīng)過封閉后在低溫下僅能存放2周左右,為了延長(zhǎng)固相酶標(biāo)板上抗原的穩(wěn)定性,我們?cè)黾恿艘徊奖Wo(hù)酶標(biāo)板的程序。在10mM的磷酸鹽中加入適量的糖、無關(guān)蛋白質(zhì)、慶大霉素以及二價(jià)金屬離子,作為酶...

抑制ELISA試劑盒實(shí)驗(yàn)*新方法

一、封閉液、洗滌液及保護(hù)液的優(yōu)化

1、封閉液的優(yōu)化

采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法進(jìn)行封閉,其封閉液的組成為:10mM磷酸鹽緩沖液含1%的牛血清白蛋白(BSA)。

2、 洗滌液的配制

采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法配制洗滌液。

3、 酶標(biāo)板保護(hù)液的優(yōu)化

酶標(biāo)板經(jīng)過封閉后在低溫下僅能存放2周左右,為了延長(zhǎng)固相酶標(biāo)板上抗原的穩(wěn)定性,我們?cè)黾恿艘徊奖Wo(hù)酶標(biāo)板的程序。在10mM的磷酸鹽中加入適量的糖、無關(guān)蛋白質(zhì)、慶大霉素以及二價(jià)金屬離子,作為酶標(biāo)板保護(hù)劑,在封閉完后加入保護(hù)液于4℃冰箱中孵育過夜,同時(shí)與未做保護(hù)的酶標(biāo)板進(jìn)行對(duì)照,然后將保護(hù)的及未保護(hù)的酶標(biāo)板置于37烘箱中放置15天,考察保護(hù)液對(duì)酶標(biāo)板的穩(wěn)定性的影響。

二、酶標(biāo)抗體稀釋度的優(yōu)化

抗原包被濃度為4ug/ml,將酶標(biāo)抗體做系列稀釋:1:100,1:200;1:300;1:400;1:500;1:600;1:1000;經(jīng)孵育、洗滌后、顯色終止后,用自動(dòng)酶標(biāo)儀分析,選擇A值為1.5左右的酶標(biāo)抗體稀釋度為*適工作濃度。

三、酶標(biāo)抗體保護(hù)液的優(yōu)化

低濃度的酶標(biāo)抗體極容易受到高溫、微生物、以及蛋白酶的影響而失活,嚴(yán)重影響產(chǎn)品的貨架期,過去通常將酶標(biāo)抗體凍干保存,然而這樣的保存,不僅由于在凍干的過程中會(huì)影響酶標(biāo)抗體的活性,而且在臨床應(yīng)用中頗為不便。適當(dāng)?shù)木彌_液以及添加無關(guān)蛋白質(zhì)、糖、防腐劑以及一些含氨基的化合物等都會(huì)對(duì)對(duì)酶標(biāo)抗體的活性起一定的保護(hù)作用,因此我們?cè)O(shè)計(jì)了一組保護(hù)劑用于保護(hù)酶標(biāo)抗體,與未添加任何糖蛋白的酶標(biāo)抗體做對(duì)照,將經(jīng)保護(hù)的酶標(biāo)抗體及未保護(hù)的酶標(biāo)抗體置于37℃烘箱中放置6天,考察保護(hù)液對(duì)酶標(biāo)抗體的影響。一、 抗體的酶標(biāo)記及質(zhì)量鑒定

本試驗(yàn)采用改良過碘酸鈉法將辣根過氧化物酶標(biāo)記在抗體上[1],標(biāo)記完后取上清用Sephedex G200 凝膠層析進(jìn)行純化,洗脫液為0.2mol/L pH7.4的PBS,流速為15ml/h,分步收集,每支3ml,以紫外分光光度計(jì)測(cè)A280吸光度值,以洗脫體積為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)做圖,ELISA試劑盒收集**峰即為酶標(biāo)抗體峰。標(biāo)記完后用紫外分光光度計(jì)在分別在280nm、及403nm處測(cè)定酶標(biāo)記物的A值,計(jì)算**球蛋白量、摩爾比值、酶結(jié)合率以及標(biāo)記率。

四、包被用緩沖液及*適包被抗原濃度的優(yōu)化

1、包被緩沖液的優(yōu)化

包被抗原時(shí),為了得到*佳的包被效果,我們采用了碳酸鹽緩沖液(50mM ph9.6 )、磷酸鹽緩沖液(50mM ph7.6)、以及TRIS鹽酸緩沖液(50 mM ph7.6)三種緩沖液作為包被液,抗原包被濃度為5ug/ml,及2.5ug/ml,酶標(biāo)抗體工作濃度為1:400及1:300,用自動(dòng)酶標(biāo)儀分析,選擇*佳的包被緩沖液系統(tǒng)。同時(shí)為了保證緩沖液能夠長(zhǎng)期保存,我們?cè)诎灰褐刑砑恿?.01%的硫柳汞作為防腐劑。

2、*適抗原包被濃度的優(yōu)化

用優(yōu)化好的包被緩沖液,將包被抗原(ALB)稀釋成0.1ug/ml,1.0ug/ml,2.0ug/ml,4.0 ug/ml,6.0 ug/ml,8.0 ug/ml,10.0 ug/ml等六個(gè)濃度,包被微孔板,每孔100ul;競(jìng)爭(zhēng)抗原濃度為4.0 ug/ml,2.0 ug/ml;酶標(biāo)抗體稀釋度為1:300,經(jīng)孵育、顯色、終止后用自動(dòng)酶標(biāo)儀分析。顯色的強(qiáng)度在一定范圍內(nèi)與包被的抗原量成正比,但隨著包被抗原濃度的增加,顯色的強(qiáng)度反而降低,我們選擇臨界包被值作為包被抗原量。

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